Serwis Infona wykorzystuje pliki cookies (ciasteczka). Są to wartości tekstowe, zapamiętywane przez przeglądarkę na urządzeniu użytkownika. Nasz serwis ma dostęp do tych wartości oraz wykorzystuje je do zapamiętania danych dotyczących użytkownika, takich jak np. ustawienia (typu widok ekranu, wybór języka interfejsu), zapamiętanie zalogowania. Korzystanie z serwisu Infona oznacza zgodę na zapis informacji i ich wykorzystanie dla celów korzytania z serwisu. Więcej informacji można znaleźć w Polityce prywatności oraz Regulaminie serwisu. Zamknięcie tego okienka potwierdza zapoznanie się z informacją o plikach cookies, akceptację polityki prywatności i regulaminu oraz sposobu wykorzystywania plików cookies w serwisie. Możesz zmienić ustawienia obsługi cookies w swojej przeglądarce.
We applied fluorescence microscopy‐based quantitative assays to living cells to identify regulators of endoplasmic reticulum (ER)‐to‐Golgi trafficking and/or Golgi complex maintenance. We first validated an automated procedure to identify factors which influence Golgi‐to‐ER relocalization of GalT‐CFP (β1,4‐galactosyltransferase I‐cyan fluorescent protein) after brefeldin A (BFA) addition and/or wash‐out. We then tested 14 proteins that localize to the ER and/or Golgi complex when overexpressed for a role in ER‐to‐Golgi trafficking. Nine of them interfered with the rate of BFA‐induced redistribution of GalT‐CFP from the Golgi complex to the ER, six of them interfered with GalT‐CFP redistribution from the ER to a juxtanuclear region (i.e. the Golgi complex) after BFA wash‐out and six of them were positive effectors in both assays. Notably, our live‐cell approach captures regulator function in ER‐to‐Golgi trafficking, which was missed in previous fixed cell assays, as well as assigns putative roles for other less characterized proteins. Moreover, we show that our assays can be extended to RNAi and chemical screens.
Podaj zakres dat dla filtrowania wyświetlonych wyników. Możesz podać datę początkową, końcową lub obie daty. Daty możesz wpisać ręcznie lub wybrać za pomocą kalendarza.